МЕХАНИЗМЫ ДОЛГОВРЕМЕННОЙ АДАПТАЦИИ, РЕАЛИЗУЕМЫЕ В СТВОЛОВОМ КРОВЕТВОРНОМ ПУЛЕ В УСЛОВИЯХ ХРОНИЧЕСКОГО ВНУТРЕННЕГО ОБЛУЧЕНИЯ СО СНИЖАЮЩЕЙСЯ МОЩНОСТЬЮ ДОЗЫ
Abstract
About the Authors
Д. ШибковаRussian Federation
Н. Ефимова
Russian Federation
Е. Толстых
Russian Federation
References
1. Аклеев А. В. Хронический лучевой синдром у жителей прибрежных сел реки Теча. Челябинск : Книга, 2012. 464 с.
2. Андрианова Л. Ф. Пролиферативные и дифференцировочные свойства СКК костного мозга у мышей линии СВА различного возраста // Физиолог. журн. 1990. Т. 36. № 5. С. 31–36.
3. Гланц С. Медико-биологическая статистика : учеб. и справ. пособие. М. : Практика, 1999. 459 с.
4. Ефимова Н. В., Шибкова Д. З. Модифицирующее действие радиационного фактора на стволовые кроветворные клетки экспериментальных животных. Челябинск : Изд-во Че-ляб. гос. пед. ун-та, 2007. 201 с.
5. Медико-биологические и экологические последствия радиоактивного загрязнения реки Теча. М. : 2001. 532 с.
6. Москалев Ю. И. Радиобиология инкорпорированных радионуклидов. М. : Энергоатомиздат, 1989. 264 с.
7. Переверзев А. Е. Кроветворные колониеобразующие клетки и физические стресс-факторы. Л. : Наука, 1986. 172 с.
8. Пряхин Е. А. Динамика изменения репарации ДНК клеток костного мозга у мышей при облучении 90Sr : дис. … канд. биол. наук. М., 1997. 135 с.
9. Шведов В. Л., Аклеев А. В. Радиобиология стронция-90. Челябинск : МЕГАС, 2001. 298 с.
10. Шибкова Д. З., Ефимова Н. В., Аклеев А. В. Механизмы компенсации в стволовом кроветворном пуле (КОЕс) в условиях экспериментального хронического γ-облучения // Радиацион. биология. Радиоэкология. 2006. Т. 46. № 5. С. 618–626.
11. Шибкова Д. З., Ефимова Н. В., Аклеев А. В. Численность, пролиферативный и дифференцировочный потенциалы стволовых кроветворных клеток при хроническом радиа-ционном воздействии // Радиацион. биология. Радиоэкология. 2001. Т. 41. № 3. С. 295–300.
12. Шибкова Д. З., Ефимова Н. В., Толстых Е. И., Андреева О. Г. Компенсаторно-приспособительные реакции стволового кроветворного пула мышей линии СВА при одно-кратном введении 90Sr // Радиацион. биология. Радиоэкология. 2005. Т. 45. № 2. С. 180–190.
13. Curry J. L., Trentin J. J. Hemopoietic spleen colony studies. I. Growth and differentiation // Develop Biol. 1967. V. 15. P. 395–413.
14. Curry J. L., Trentin J. J., Wolf N. Hemopoietic spleen colony studies. II. Erythropoiesis // J Exp Med. 1967. V. 125. № 5. P. 703–719.
15. Degteva M. O., Kozheurov V. P., Vorobiova M. I. General approach to dose reconstruction in the population exsposed as a result of the release of radiative wastes in to the Tecya river // The Science of the Total Environment. 1994. V. 142. P. 49–61.
16. Inoue T., Gonkite E. P. The influence of in vivo incubation of aged murin spleen colony-forming units on their proliferative capacity // Mech Ageing and Develop. 1983. V. 23. P. 177–190.
17. Krestinina L. Y., Davis F. G., Schonfeld S., Preston D. L., Degteva M., Epifanova S., Akleyev A. V. Leukaemia incidence in the Techa River Cohort: 1953–2007 // Br J Cancer. 2013. Nov 26. № 109 (11). Р. 2886–93.
18. Nilsson A. Pathologic effects of different doses of radiostrontium in mice. Dose effect relationship in 90Sr-induced tumors //Acta Radiol Ther Phy. Biol. 1970. V. 9. P. 155–175.
19. Synhaeve N., Wade-Gueye N. M., Musilli S., Stefani J., Grandcolas L., Gruel G., Souidi M., Dublineau I., Bertho J.M. Chronic exposure to low concentrations of strontium 90 affects bone physiology but not the hematopoietic system in mice // J Appl Toxicol. 2014. № 34 (1). Р. 76–86. doi: 10.1002/jat.2834.
20. Till J. F., McCulloch E. A. A direct measurement of the radiation sensitivity of normal mouse bone marrow cells // Radiat Res. 1961. V. 14. P. 213–222.
21. Tolstykh E. I., Peremyslova L. M., Degteva M. O., Napier B. A. Reconstruction of radio-nuclide intakes for the residents of East Urals Radioactive Trace (1957–2011) // Radiat Environ Bi-ophys. 2017. № 56 (1). Р. 27–45. doi: 10.1007/s00411-016-0677-y.
Review
For citations:
, , . Surgut State University Journal. 2018;(4 (22)):107-114. (In Russ.)